УВАГА! Клієнти за попереднім записом обслуговуються позачергово!

Корисна інформація

Корисна інформація

 

Правила підготовки та відбору біоматеріалу

  1. Правила підготовки до мікробіологічних та ПЛР досліджень

1.1 Загальні правила підготовки до мікробіологічного та ПЛР досліджень

  • Дослідження слід проводити до початку лікування антимікробними, протигрибковими, імунобіологічними препаратами або не раніше ніж через 7 днів після закінчення прийому препаратів.
  • Якщо пацієнт вже приймає антибіотики або антимікотики і припинити прийом препаратів неможливо, то матеріал необхідно відбирати безпосередньо перед черговим введенням або прийомом лікарського засобу.
  • Контроль лікування проводять у разі проведення дослідження на Trichomonas vaginalis: через 4 - 6 тижнів, якщо збудник був виділений із еякуляту, і через 2 тижні у решті випадків.
  • Застосування антибіотиків і антимікотиків у вигляді мазей, крапель, вагінальних або ректальних свічок тощо слід припинити за 3 доби до дослідження.
  • Використання інших препаратів місцевого застосування (мазі, гелі, спреї, рідини для полоскання, спринцювання тощо), які не містять антибіотиків, антимікотиків слід припинити за 12 годин до дослідження.
  • За 3 доби до дослідження не приймати ванни та не користуватись басейном.

1.2 Загальні правила відбору матеріалу для мікробіологічного та ПЛР досліджень

  • Відбір матеріалу  проводиться медичним персоналом, який пройшов спеціальне навчання з техніки відбору матеріалу і заходів безпеки.
  • Слід дотримуватися асептичних умов для запобігання інфікування пацієнта в процесі виконання інвазивних маніпуляцій.
  • Перед відбором матеріалу на ємностях, які будуть використовуватись, обов’язково вказати дані пацієнта, вид матеріалу, дату та час відбору, а також (при наявності) штрих-код. На кожен вид матеріалу заповнити направлення. Дублікат штрих-коду наклеїти на направлення.
  • Матеріал слід відбирати безпосередньо із вогнища інфекції, уникаючи забруднення сусідніх тканин або секретів.
  • Матеріал слід відбирати із мінімальним забрудненням оточуючою нормальною мікрофлорою, оскільки її наявність призводить до помилкового трактування результатів.
  • Для відбору проб біологічного матеріалу слід використовувати стерильні інструменти.
  • Зберігати та транспортувати матеріал необхідно у стерильних пластикових одноразових контейнерах та ємностях із транспортними середовищами або без них окремо від супровідної документації.
  • Під час відбору матеріалу важливо не забруднювати зовнішню поверхню ємностей, не торкатися їх країв.
  • Не забруднювати супровідні документи (направлення).
  • Матеріал слід відбирати в кількості (масі, об'ємі), достатній для виконання комплексу досліджень, оскільки недостатня кількість біологічного матеріалу призводить до отримання помилкових результатів.

1.2.1 Додаткові умови для забору матеріалу для мікробіологічного дослідження

Грудне молоко:

  • Перед відбором молока слід провести масаж щільних ділянок молочних залоз.
  • Перед зціджуванням молока слід ретельно вимити руки і молочні залози теплою водою з милом.
  • Обробити соски та навколососкову зону ватним тампоном, змоченим 70% спиртом,  кожну залозу -  окремим тампоном.

Мокротиння:  

  • Біоматеріал слід доставити в лабораторію не пізніше 2 годин після забору
  • Досліджувати слід ранкову порцію мокротиння, що виділяється під час приступу кашлю.
  • Якщо мокротиння виділяється погано, напередодні пацієнту слід дати відхаркувальний засіб.
  • Перед здачею мокротиння потрібно почистити зуби, прополоскати ротову порожнину кип'яченою водою.

Матеріал із зіву:

  • Мазок робиться натщесерце або через 2-3 години після їжі.

Не допускається

  • Чистити зуби перед аналізом.
  • Пити будь-яку рідину за 2-3 години до відбору мазка.

Матеріал з ока:

  • Матеріал для дослідження необхідно збирати вранці до вмивання.

Не допускається проведення будь-яких медичних процедур за 6-8 годин до проведення дослідження.

Матеріал з носа:

  • Перед отриманням матеріалу з носа пацієнт повинен висякатися або очистити ніс сухим ватним тампоном і видалити корки.

Матеріал з піхви / цервікального каналу:

  • Матеріал слід отримувати до проведення мануального дослідження.
  • Дослідження слід проводити до менструації або не раніше ніж через 3 доби після її закінчення.

 Не допускаються статеві контакти за 3 доіби до аналізу (до статевих контактів прирівнюється мануальний огляд у гінеколога, інтравагінальне УЗД, кольпоскопія)

Матеріал з уретри:

  • У жінок відбір матеріалу слід проводити до менструації або через 3 доби після її завершення.
  • За 3 год до відбору матеріалу слід утриматись від сечовипускання

Не допускаються статеві контакти та сім’явиверження за 3 доби до аналізу (до статевих контактів у жінок прирівнюється мануальний огляд у гінеколога, інтравагінальне УЗД, кольпоскопія).

Простата:

  • Матеріал відбирати одразу після сечовипускання і прибирання останньої краплі сечі.
  • Перед дослідженням бажано зробити очисну клізму і провести ретельний туалет зовнішніх статевих органів за допомогою мила та кип’яченої води.

       Не допускаються статеві контакти за 3 доби до аналізу

Сперма:

  • Забір матеріалу проводиться самостійно пацієнтом у стерильний контейнер.
  • За 24 години до забору матеріалу необхідно виключити тепловий вплив на область статевих органів (лазня, сауна тощо).

Кал на патогенну флору:

  • Відбір проб калу повинен виконуватися на ранніх етапах захворювання, поки патогенні бактерії містяться в матеріалі у великій кількості.
  • Відбір слід проводити перед виконанням ректороманоскопії та інших діагностичних маніпуляцій у ділянці кишечника та шлунку.

Не допускається:

  • Вживання алкоголю, кисломолочних та інших продуктів, що підсилюють процеси бродіння в кишечнику, за 2-3 доби до дослідження.
  • Застосування клізм та проносних засобів.
  • Проведення рентгеноскопічного дослідження з використанням контрастних речовин за 2 доби до дослідження.

Правила відбору видів біоматериіалу  на мікробіологічне дослідження

Калу

  • Відбір матеріалу здійснюється самим пацієнтом.
  • Перед відбором матеріалу слід випорожнити сечовий міхур.
  • Матеріал для дослідження необхідно збирати зранку в стерильну ємність для калу з ложечкою.
  • Кал зібрати на чисту поверхню, наприклад, на щільний стерильний папір, що не вбирає воду (в домашніх умовах пропрасувати гарячою праскою і згорнути пропрасованою поверхнею всередину) або в горщик (попередньо добре обробити губкою з милом і декілька разів обмити водопровідною водою, потім обдати окропом і охолодити).
  • Заповнити контейнер середньою порцією калу не більше ніж на 1/3.
  • Контейнер слід щільно закрити кришкою і упакувати в чистий одноразовий пакет.

Не допускається:

  • Відбір проб калу в жінок під час менструації (натомість слід забирати матеріал за 2 доби до або після менструації).
  • Обробка посуду для відбору калу дезінфектантами.
  • Потрапляння в зразок калу сечі чи води.

 Сеча:

Відбір проби сечі у жінок

  • Промити ретельно теплою водою з милом зовнішні статеві органи.
  • Отвір піхви слід закрити стерильним ватним тампоном.
  • Зовнішні статеві губи слід тримати на відстані одна від одної при сечовипусканні.
  • Спустити невелику кількість сечі в унітаз або в посуд для утилізації, не припиняючи при цьому сечовипускання.
  • Зібрати середню порцію сечі в об’ємі не менше половини ємності, але не більше 2/3.

Відбір проби сечі у чоловіків

  • Промити теплою водою з милом пеніс і відтягнуту крайню плоть (при її наявності), з особливою ретельністю обробляючи отвір сечовипускального каналу (для уникнення додаткової контамінації мікроорганізмами і висушити стерильною марлевою серветкою.
  • Відвести крайню плоть назад (при її наявності) для запобігання контамінації проби сечі мікроорганізмами шкіри і випустити невелику кількість сечі в унітаз або в посуд для утилізації, не припиняючи при цьому сечовипускання.
  • Зібрати середню порцію сечі в об’ємі не менше половини ємності, але не більше 2/3.

Відбір проби сечі у дітей

  • Медичний працівник, який збирає пробу, або батьки повинні помити руки з милом.
  • Дати дитині воду.
  • Посадити дитину на коліна одного з батьків або медичного працівника. Подальші етапи збору проби проводяться так само, як описано раніше для жінок і чоловіків (в залежності від статі). Виключення: дівчатам не варто закривати тампоном отвір піхви.
  •  Зібрати середню порцію сечі в об’ємі не менше половини ємності, але не більше 2/3.

Не допускається:

  • Відбір сечі з постільної білизни.
  • Використання першої порції струменя та добової проби сечі.
  • Обробка статевих органів дезінфектантами, оскільки при потраплянні в пробу вони можуть інгібувати ріст мікроорганізмів.
  1.  Правила підготовки до мікробіологічного дослідження на дерматофіти та міцеліальні гриби

Шкіру та нігті бажано попередньо вимити господарським милом та висушити.

Не допускається:

  • Відбір пофарбованих нігтів.
  • У випадку використання будь-якого покриття необхідно його зняти за 7 діб до дослідження.
  • Мити волосся протягом 3 діб до дослідження.
  • Будь-які гігієнічні процедури в місці ураження в день дослідження
  1. Правила підготовки для мікробіологічного дослідження на НELICOBACTER PYLORI

  • За 14 діб до аналізу слід припинити прийом інгібіторів протонної помпи.
  • За 4 тижні до дослідження необхідно припинити вживання препаратів вісмуту.
  • Підготовка до аналізу співпадає зі стандартним проведенням ендоскопічного дослідження.
  • Ендоскопію слід проводити натщесерце не раніше ніж через 12 годин після останнього прийому їжі.
  • Не допускається паління перед ендоскопією.
  1. Правила підготовки до мікробіологічного дослідження на виявлення  TRICHОMONAS VAGINALIS, GARDNERELLA VAGINALIS, NEISSERIA SPP.

  • Матеріал слід отримувати до проведення мануального дослідження.
  • У жінок відбір матеріалу слід проводити до менструації або через 3 доби після її завершення.
  • За 3 год до відбору матеріалу слід утриматись від сечовипускання.

 Не допускається:

  • Статеві контакти та сім’явиверження за 3 доби до аналізу (до статевих контактів у жінок прирівнюється мануальний огляд у гінеколога, інтравагінальне УЗД, кольпоскопія).
  1.  Правила відбору та посіву біоматеріалу на стерильність

Кров

  • Відбір крові слід здійснювати «на підйомі температури».
  • Проби крові слід отримувати шляхом венепункції периферичних вен (частіше за все вени ліктьового згину), як дітям, так і дорослим.
  • Об’єм крові необхідний для посіву: у дорослих слід взяти 10мл крові, у дітей 0,1-4,0 мл.
  • З верху пробки необхідно зняти пластикову захисну пластину, обробити її серветкою, змоченою 70% етанолом та дати висохнути.
  • Ділянку шкіри над вибраною для пункції судиною обробити серветкою, змоченою 70% етанолом, або іншим антисептиком, дозволеним до застосування для цих цілей в установленому порядку, круговими рухами починаючи від центру, протягом 30 секунд.
  • Почекати, поки висохне оброблена ділянка.

Процедура посіву при заборі крові за допомогою шприца

  • Виконати венепункцію і перенести кров у флакон змінивши голку.
  • Якщо необхідно виявити аеробні і анаеробні мікроорганізми, то кров слід внести спочатку в анаеробну ємність, а потім у аеробну для того щоб кисень, який накопичився у шприці не потрапив у флакон для анаеробів;
  •  При заповненні флакона необхідно орієнтуватися на мітку обсягу на етикетці. При досягненні необхідного обсягу заповнення слід видалити шприц, оскільки через вакуум автоматично відбереться кількість більша рекомендованого максимуму. Для запобігання порушення вакууму необхідно проколювати пробку флакона в вертикальному положенні.
  • Місце проколу судини заклеїти лейкопластирем, після цього пацієнту слід зігнути руку в лікті.

Процедура посіву при безпосередньому відборі крові шляхом венепункції

  • Заберіть кров за допомогою системи забору крові з голкою-метеликом і адаптером для взяття крові у флакони для культивування.
  • При одночасному посіві у флакони для культур крові BacT / ALERT декількох типів з використанням системи забору крові з голкою - метеликом і адаптера для безпосереднього взяття крові спочатку потрібно вносити зразок у флакон для виділення аеробних мікроорганізмів, а потім - для виділення анаеробних мікроорганізмів, щоб кисень, який накопичився в трубці, не потрапив у флакон для виділення анаеробних мікроорганізмів.
  •  Щоб уникнути посіву надмірного обсягу, відстежуйте обсяг крові який забирається у флакон. Для наповнення флакона приблизно на 10 мл орієнтуйтеся по лінії рівня заповнення на етикетці флакона, або ж за допомогою мітки обсягу з кроком 5 мл на етикетці флакона для оцінки обсягу внесеного зразка.
  • В ході всієї процедури ретельно контролюйте процес безпосереднього забору, забезпечуючи належний потік і не допускаючи попадання вмісту флакона в трубку адаптера. Оскільки у флаконі для культивування містяться хімічні добавки, важливо слідувати вказаній вище покроковій процедурі, щоб не допустити можливий зворотній потік.
  • Тримайте флакон для культивування нижче руки пацієнта у вертикальному положенні (пробкою догори).
  • Відпустіть джгут, як тільки кров почне надходити у флакон для культивування або протягом 2 хвилин після його накладення.
  • Простежте за тим, щоб вміст флакона не торкався пробки або кінця голки під час забору крові.
  • Місце проколу судини заклеїти лейкопластирем, після пацієнту слід зігнути руку в лікті.

Особливості посіву крові у дітей.

  • Посів здійснюється за методиками описаними вище, але у спеціальні дитячі флакони із жовтою кришкою.
  • Рекомендований об’єм крові 4,0 мл. Мінімальний об’єм крові 0,1 мл.
  • При заповненні флакона необхідно орієнтуватися на мітку обсягу 4,0 мл на етикетці.

Не допускається:

  • Пальпування судини після обробки шкіри перед введенням голки.
  • Вдавлювання поршня шприца із зусиллям при виконанні посіву, так як може статися розбризкування зразка.
  • Здійснення посіву у флакон з порушеним вакуумом.

Спинномозкова (ліквор), синовіальна, плевральна та інші стерильні рідини

  • Перед проведенням пункції та черезшкірної аспірації слід ретельно очистити вибрану ділянку шкіри 70% етанолом; продезінфікувати 1-2% розчином йоду або іншим дезінфектантом, дозволеним до застосування для даних цілей, для запобігання інфекції. Надлишок йоду видалити марлевою серветкою, змоченою 70% етанолом, щоб уникнути опіку шкіри пацієнта.
  •  Ліквор одержують шляхом люмбальної пункції із субарахноїдального простору між хребцями L3 - L4, L4 - L5 або L5 - S1, а також шляхом пункції бічних шлуночків мозку та вносять у флакон із середовищем.
  •  Дотримуючись правил асептики, виконують черезшкірну аспірацію для отримання проб плевральної, перикардіальної, перитонеальної або синовіальної рідини. Отриману рідину вносять у флакон.

Відбір  стерильних рідин та біоптатів для псіву на міцеліальні гриби

  • Кров відбирають 2 рази на день протягом 2 днів .
  • Відбір крові має проводитися двома медичними працівниками в процедурному кабінеті або біля ліжка хворого.
  • Проби крові слід отримувати шляхом венепункції периферичних вен (частіше за все вени ліктьового згину), у немовлят – із п’яти.
  • Ділянку шкіри над вибраною для пункції судиною обробити серветкою, змоченою 70% етанолом, або іншим антисептиком, дозволеним до застосування для цих цілей в установленому порядку, круговими рухами починаючи від центру, протягом 30 секунд.
  • Почекати, поки висохне оброблена ділянка.
  • Перший працівник виконує венепункцію. Другий працівник, біля полум’я спиртового пальника відкриває флакон. Перший - вносить кров у флакон із бульйоном Сабуро, другий – закриває флакон.
  • Місце проколу заклеїти лейкопластирем, після чого пацієнту слід зігнути руку в лікті.

Не допускається:

  • Пальпування судини після обробки шкіри перед введенням голки.